Coté NAC

La peau des oiseaux est plus fine que celle des Mammifères hormis sur les pattes où elle est écailleuse. Elle ne contient pas de glandes sudoripares ou sébacées, à l’exception des glandes du canal auriculaire externe et de la glande uropygienne. Comme chez les Mammifères, elle est constituée d’un épiderme et d’un derme mais le tissu sous-cutané n’est significativement présent qu’en région axillaire et sur la ligne médiane ventrale.

• L’épiderme est constitué de trois couches : germinative, intermédiaire et cornée. Il produit des graisses neutres et des phospholipides, qui rendent la peau fortement lipogénique^₁. Cette particularité est considérée aider à l’imperméabilisation et l’inhibition de la croissance des bactéries et des champignons.
• Le derme contient les follicules plumeux, nerfs, neurorécepteurs, muscles, vaisseaux sanguins et dépôts graisseux.

La flore bactérienne normale chez les Gris du Gabon captifs est pauvre et constituée majoritairement de Staphylococcus sp., suivi par Corynebacterium sp. et Streptococcus sp. À noter que chez 38% (n=26) des Gris du Gabon étudiés aucune bactérie n’est identifiable par culture.

Cliniquement, cet oiseau souffre de dermatite ulcérative chronique. Il s’agit d’une affection fréquemment rencontrée chez les inséparables, les cacatoès et les gris du Gabon. Elle est le plus souvent localisée sous l’aile, dans l’aine, sur le côté du cou, le dos ou la base de la queue. Ce syndrome est caractérisé par un épaississement de la peau associé à des ulcérations et des sécrétions. Les patients manifestent généralement des signes de douleur et de prurit. Ce syndrome peut avoir de nombreuses causes incluant des causes néoplasiques (carcinome squamocellulaire, kératome, xanthome), infectieuse (dermatite bactérienne à S. aureus, E. cloacae ou E. coli, mycobactériose cutanée, circovirose, polyomavirose, giardiose)^_3,4 ou traumatique^₅. Parmi les causes traumatiques des brûlures (thermique ou chimique) ou de l’automutilation sont possibles, cette dernière pouvant avoir une cause médicale (toute organopathie ou processus algique), environnementale (manque d’activité physique, taille de plume mal réalisée, exposition toxique notamment à la fumée de cigarette, carence alimentaire dont les carences en acides gras oméga 3 ou en vitamine A et E) ou comportementale^₆.

Lors d’automutilation, seules les zones accessibles au bec de l’oiseau sont endommagées, ce qui n’est pas le cas dans le cas présenté de sorte que cette hypothèse est réfutée. Dans notre cas l’absence d’anomalie observée avec les examens complémentaires rendent une atteinte primaire de la peau plus probable.

Les examens complémentaires réalisables au chevet des oiseaux pour explorer un problème cutané incluent^_7,8:

• Un examen des plumes : L’examen macroscopique et microscopique des plumes permet d’évaluer la condition globale des structures. Des ectoparasites, barres de stress et signes de trauma auto-infligés peuvent être observés. Pour améliorer les chances d’identifier des ectoparasites (par exemple des acariens du calamus) la plume peut être digérée en utilisant de l’hydroxyde de potassium. Le calamus de la plume est placé dans une solution d’hydroxyde de potassium à 10%, légèrement chauffé, centrifugé, et le sédiment est évalué au microscope. Il est également possible de réaliser une cytologie de la pulpe de la plume en récoltant des plumes en croissance et en expulsant le contenu sur une lame de microscope. La première goutte est généralement constituée de sang et devrait être éliminée. Sous le microscope et après coloration, il est possible d’observer des signes de folliculite en observant des cellules inflammatoires, bactérie, corps d’inclusion viral et éléments fongiques.
• Un test au ruban adhésif est principalement utilisé pour identifier des levures, bactéries voire des ectoparasites, lors de lésions sèches. Une attention particulière doit être portée lors de l’interprétation des échantillons, car les débris de kératine et la poudre de plume peuvent apparaître de façon similaire à des levures.
• Un calque cutané peut être utilisé pour identifier des levures et des bactéries lors de lésions croûtées, exsudatives et humides. Si l’obtention d’un échantillon est difficile, un coton-tige humide peut être roulé sur la lésion puis appliqué sur une lame.
• Un raclage cutané : Une lame de scalpel peut être utilisée pour collecter un échantillon épidermique. La lame est raclée de façon répétée sur la surface de la peau jusqu’à ce que des débris soient collectés. Les débris sont ensuite placés sur une lame de microscope et évalués au microscope. Le prélèvement peut être mélangé avec de l’huile minérale et évalué directement (à la recherche d’acariens) ou étalé sur une lame et coloré (à la recherche de bactéries). Le raclage est indiqué pour le diagnostic d’acariens.

Dans notre cas, l’examen des plumes ne révèle pas d’anomalie (Fig.3) et un calque cutané montre la présence de nombreuses bactéries de type coccobacilles (Fig.3). Idéalement, une culture bactérienne ou fongique devrait être demandée. Un écouvillon superficiel de la peau peut être soumis; toutefois, ce type de prélèvement est sujet à des résultats faussés par la présence de contaminants environnementaux. Le calamus d’une plume peut également être examiné en cas de pulpite. Enfin, une biopsie tissulaire préparée aseptiquement peut être l’objet d’une culture, et représente la méthode de choix. Dans notre cas, en l’absence de diagnostic de certitude, la réalisation d’une biopsie cutanée pour analyse histopathologique est décidée.

Le patient aviaire est préparé de la même manière qu’un autre animal de compagnie. Une préparation aseptique n’est pas recommandée car elle peut interférer avec le diagnostic^₉, et il n’y a généralement pas besoin de retirer de plume. Les biopsies devraient inclure une région représentative de la maladie et une zone de peau saine pour donner les meilleures chances de diagnostiquer le problème^_10,11. Le choix de la région anatomique devrait aussi prendre en compte de ne pas endommager de follicules plumeux des rémiges primaires ou secondaires car des lésions irréversibles pourraient en résulter^₉. Compte-tenu de la nature fine et fragile de la peau des oiseaux, des précautions particulières doivent être prises lors du prélèvement de tissu.

Deux techniques sont décrites :

• Des biopsies « punch » peuvent être obtenues avec un emporte-pièce à biopsie de 4 à 6 mm de diamètre. Un mouvement de rotation est appliqué sur l’emporte-pièce à biopsie dans le sens des aiguilles d’une montre puis dans le sens inverse des aiguilles d’une montre de sorte à seulement pénétrer une couche de peau. La biopsie est alors saisie avec une pince et surélevée puis une paire de petits ciseaux fins est utilisée pour retirer précautionneusement la biopsie. Une attention particulière devrait être prise lors de la rotation à ce qu’une seule couche dermique soit pénétrée, car l’application d’une force excessive peut induire des lésions à des tissus plus profond, particulièrement délétère notamment sur les ailes où certaines structures nerveuses et vasculaires qui sont superficielles^₁₂.
• Des biopsies incisionnelles peuvent être réalisées à l’aide d’une lame de scalpel ou plus facilement avec une paire de petits ciseaux fins. Cette technique est privilégiée compte-tenu de la nature fine et délicate de la peau et du risque associé à l’utilisation d’emporte-pièce à biopsie chez ces animaux (Fig. 4).

La peau des oiseaux est fine et possède peu de tissu adipeux sous-cutané de sorte qu’elle a tendance à se rouler sur elle-même, ce qui complique la découpe et l’interprétation par le pathologiste. Pour éviter cela la biopsie peut être réalisée après avoir appliqué une bande adhésive sur la peau^₁₃, ou être épinglée sur une structure rigide (Fig. 4). Cela permet de maintenir la peau en place et aide le pathologiste à identifier facilement les couches épithéliales de surface. Dans les deux cas, les prélèvements sont placés dans des cassettes avec une solution de formaline à 10%. Le site chirurgical est fermé avec un fil de suture résorbable et en utilisant des points continus simples. Un collier élisabéthain peut être utilisé en cas d’automutilation.